亚洲综合无码一级片无码的_国产丝袜一二三四区乱码_欧美福利大片二区_男人边吃奶边做边爱免费

高效、務實、嚴謹、敬業(yè)
服務目錄
技術(shù)服務
技術(shù)專題
聯(lián)系我們

聯(lián)系我們

廣州賽誠生物科技有限公司
廣州市黃埔區(qū)學大道攬月路廣州企業(yè)孵化器B座402
電話:020-85625352
手機:18102256923、18102253682
Email:servers@gzscbio.com
Fax:020-85625352
QQ:386244141

項目名稱:RIP測序與分析報告

所屬分類:生物信息學分析-報告解讀

聯(lián)系電話:020-85625352

QQ:386244141

Email:servers@gzscbio.com

技術(shù)服務描述

1. 工作流程

??RNA免疫共沉淀(RIP)是一種用于研究蛋白質(zhì)與 RNA 的體內(nèi)相互作用的經(jīng)典實驗技術(shù)。采用特異性抗體將目的蛋白進行免疫沉淀,由此可以把目的蛋白所結(jié)合的RNA片段也富集下來。通過與高通量測序技術(shù)的結(jié)合,對 RIP 后的RNA 產(chǎn)物進行測序分析, 從全基因組范圍內(nèi)尋找目的蛋白的 RNA 結(jié)合位點,以高效率的測序手段得到高通量的數(shù)據(jù)結(jié)果。


1.1. RIP 免疫沉淀實驗流程

??目前主要有兩種不同的RIP 實驗方法,大致流程如下(以細胞樣品的處理過程為例):

RNA Immunoprecipitation

  1. 準備足量的新鮮細胞,每個IP約1x107個細胞,用RIP裂解液裂解細胞

  2. 加入2-5ug抗體,抗體與蛋白,4℃孵育過夜

  3. 加入proteinA/G磁珠,4℃孵育4-6小時

  4. 清洗磁珠。

  5. Proteinase K 解交連。

  6. 酚氯仿或RNA提取試劑盒提取RNA

  7. QPCR 檢測或建庫測序


1.2. RIP Sequencing 文庫構(gòu)建流程

  1. 用qubit 及2100對RIP片段進行定量及片段長度檢測

  2. 加入適當?shù)腗g2+,加熱打斷RNA片段

  3. 加入反轉(zhuǎn)錄酶,反轉(zhuǎn)錄成cDNA

  4. 斷裂RNA鏈且以斷裂RNA為引物,cDNA為模版,形成雙鏈DNA

  5. 補齊片段末端,并在3’末端加A尾

  6. 添加Adapter

  7. 0.8X AMPure beads去掉多余的Adapter

  8. 文庫PCR擴增

  9. 1XAMPure beads 去掉多余的primer

  10. qPCR測定文庫濃度

  11. Agilent 2100測定文庫片段大小


1.3. 生物信息分析流程

??將測序結(jié)果與參考基因組比對,比對上唯一位置的序列用于后續(xù)標準信息分析及個性化分析。信息分析流程如下:


2. 生物信息分析

2.1. RIP Sequencing 文庫質(zhì)檢結(jié)果

??文庫片段質(zhì)檢,RIP文庫的染色質(zhì)片段在150-300bp之間,建庫加入約140bp的接頭后,片段應該分布在300-450bp之間為最好。




Ladder 自下而上依次為 25(綠色),200,500,1000,2000,4000nt




2.2. 測序數(shù)據(jù)質(zhì)量控制

??對原始測序數(shù)據(jù)及去除接頭后的可用數(shù)據(jù)進行質(zhì)量評估。RIP數(shù)據(jù)一般為雙端測序,因此,每個測序樣本會有兩個測序結(jié)果。

??評估的具體內(nèi)容見:



結(jié)果說明結(jié)果路徑
RawData-fastqc 文件鏈接/Results/01.qc/qc_rawdata/*.html
CleanData-fastqc 文件鏈接/Results/01.qc/qc_cleandata/*.html
Fastqc 格式補充說明/Results/01.qc/qc_Supplement/qc_Supplement.html



??以上結(jié)果均位于文件夾:/Results/01.qc/

2.3. Peak calling數(shù)據(jù)統(tǒng)計結(jié)果

??質(zhì)檢后的reads,采用trim-galory對reads進行去接頭,去接頭后,再次對reads進行質(zhì)檢,主要檢測接頭是否去除干凈。去除接頭的reads,用hisat2軟件將reads mapping到基因組上,得到reads在基因組上的信息,即.bam文件,將input的.bam文件與IP的.bam文件,通過MASC2進行 peak calling,得到peak文件,即為.bed文件,對得到的peak進行注釋,并進行功能分析。

??采用常用 reads 富集峰鑒定軟件 MACS2 在全基因范圍進行 peak 掃描,得到 Peak 在基因組上的位置信息、peak 富集信息等。


圖 2.4.1 全基因組 Reads 富集峰

??使用Chipseeker對Reads富集峰進行注釋,得到tss上下游3k的基因注釋信息。使用bedtools對富集峰與lncRNA取交集得到所在基因,將得到的lncRNA基因同樣使用chipseeker(僅用 Protein-coding 注釋)進行上下游10k的臨近基因注釋,對基因結(jié)果進行后續(xù)富集分析。


圖 2.4.2 Peak信息anno流程圖


??結(jié)果文件:



結(jié)果說明結(jié)果路徑
reads在基因組上的分布信息DYQ-HCT116-target.bw
callPeak peak信息DYQ-HCT116_peaks.bed
callPeak tss上下游3k注釋信息DYQ-HCT116_peaks.PeakAnno.xls
callPeak 與 lncRNA 交集peak信息DYQ-HCT116_peaks_lncRNA.bed
交集peak信息與臨近Protein-coding的注釋信息Peak_LncRNA_Anno_Protein-coding.xls
交集peak信息與臨近Protein-coding的注釋信息(bed)Peak_LncRNA_Anno_Protein-coding.bed
注釋信息的基因信息匯總gene.list.annoinfo.xls



??以上結(jié)果均位于文件夾: /Results/02.callPeak

2.4. Peak 基因注釋與 GO 功能分析

??Peak 所在基因進行GO 功能分析,并按照基因功能進行聚類分析。y軸為基因的功能聚類,x軸為基因count數(shù),顏色為校正p值。GO功能富集以padj小于0.05作為為顯著性富集的閾值,GO分析有3種類型,分別為CC(細胞組分),MF(分子功能),BP(生物過程)。富集結(jié)果見:

??條形圖縱坐標為GO Term,縱坐標為count數(shù),顏色從紅到紫代表富集的顯著性大小。


圖 2.5.1 Peak 相關基因的GO 功能富集分析(條形圖)


??氣泡圖縱坐標為GO Term,點的大小代表注釋到GO Term上的基因數(shù),顏色從紅到紫代表富集的顯著性大小


圖 2.5.2 Peak 相關基因的 GO 功能富集分析(氣泡圖)


結(jié)果文件:

/Results/03.enrichment/go/*

2.5. Peak 基因注釋與 KEGG通路分析

??KEGG(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)是整合了基因組、化學和系統(tǒng)功能信息的綜合性數(shù)據(jù)庫。KEGG通路富集以padj小于0.05作為顯著性富集的閾值,富集結(jié)果如下表所示,見結(jié)果文件:Enrichment/KEGG。 ?從KEGG富集結(jié)果中,選取最顯著的20個KEGG通路繪制柱狀圖進行展示,若不足20個,則繪制所有通路,如下圖所示。圖中橫坐標為KEGG通路,縱坐標為通路富集的顯著性水平,數(shù)值越高越顯著。


圖 2.6.1 Peak 相關基因的KEGG通路富集分析(條形圖)


??氣泡圖縱坐標為GO Term,點的大小代表注釋到GO Term上的基因數(shù),顏色從紅到紫代表富集的顯著性大小


圖 2.6.2 Peak 相關基因的KEGG通路富集分析(氣泡圖)


結(jié)果文件:

/Results/03.enrichment/kegg/*