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項(xiàng)目名稱:染色質(zhì)免疫共沉淀測序 RIP-Seq 結(jié)題報告
所屬分類:生物信息學(xué)分析-報告解讀
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技術(shù)服務(wù)描述
染色質(zhì)免疫共沉淀測序 RIP-Seq 結(jié)題報告
生信部
2020年08月25日
項(xiàng)目信息
合同編號:XXX-2020-01-01-01
客戶姓名:XXX
客戶單位:X X X X X X
1. 工作流程
RNA免疫共沉淀(RIP)是一種用于研究蛋白質(zhì)與 RNA 的體內(nèi)相互作用的經(jīng)典實(shí)驗(yàn)技術(shù)。采用特異性抗體將目的蛋白進(jìn)行免疫沉淀,由此可以把目的蛋白所結(jié)合的RNA片段也富集下來。通過與高通量測序技術(shù)的結(jié)合,對 RIP 后的RNA 產(chǎn)物進(jìn)行測序分析, 從全基因組范圍內(nèi)尋找目的蛋白的 RNA 結(jié)合位點(diǎn),以高效率的測序手段得到高通量的數(shù)據(jù)結(jié)果。
1.1. RIP 免疫沉淀實(shí)驗(yàn)流程
目前主要有兩種不同的RIP 實(shí)驗(yàn)方法,大致流程如下(以細(xì)胞樣品的處理過程為例):
RNA Immunoprecipitation
準(zhǔn)備足量的新鮮細(xì)胞,每個IP約1x107個細(xì)胞,用RIP裂解液裂解細(xì)胞
加入2-5ug抗體,抗體與蛋白,4℃孵育過夜
加入proteinA/G磁珠,4℃孵育4-6小時
清洗磁珠。
Proteinase K 解交連。
酚氯仿或RNA提取試劑盒提取RNA
QPCR 檢測或建庫測序
1.2. RIP Sequencing 文庫構(gòu)建流程
用qubit 及2100對RIP片段進(jìn)行定量及片段長度檢測
加入適當(dāng)?shù)腗g2+,加熱打斷RNA片段
加入反轉(zhuǎn)錄酶,反轉(zhuǎn)錄成cDNA
斷裂RNA鏈且以斷裂RNA為引物,cDNA為模版,形成雙鏈DNA
補(bǔ)齊片段末端,并在3’末端加A尾
添加Adapter
0.8X AMPure beads去掉多余的Adapter
文庫PCR擴(kuò)增
1XAMPure beads 去掉多余的primer
qPCR測定文庫濃度
Agilent 2100測定文庫片段大小
1.3. 生物信息分析流程
將測序結(jié)果與參考基因組比對,比對上唯一位置的序列用于后續(xù)標(biāo)準(zhǔn)信息分析及個性化分析。信息分析流程如下:
2. 生物信息分析
2.1. RIP Sequencing 文庫質(zhì)檢結(jié)果
文庫片段質(zhì)檢,RIP文庫的染色質(zhì)片段在150-300bp之間,建庫加入約140bp的接頭后,片段應(yīng)該分布在300-450bp之間為最好。
2.2. 下機(jī)數(shù)據(jù)結(jié)果
2.3. 測序數(shù)據(jù)質(zhì)量控制
對原始測序數(shù)據(jù)及去除接頭后的可用數(shù)據(jù)進(jìn)行質(zhì)量評估。RIP數(shù)據(jù)一般為雙端測序,因此,每個測序樣本會有兩個測序結(jié)果。
評估的具體內(nèi)容見:
RawData-fastqc 文件鏈接: /result/01.qc/qc_rawdata/*.html
CleanData-fastqc 文件鏈接: /result/01.qc/qc_cleandata/*.html
Fastqc 格式補(bǔ)充說明: /result/01.qc/qc_Supplement.html
2.4. Peak calling數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)結(jié)果
質(zhì)檢后的reads,采用trim-galory對reads進(jìn)行去接頭,去接頭后,再次對reads進(jìn)行質(zhì)檢,主要檢測接頭是否去除干凈。去除接頭的reads,用hisat2軟件將reads mapping到基因組上,得到reads在基因組上的信息,即.bam文件,將input的.bam文件與IP的.bam文件,通過MASC2進(jìn)行 peak calling,得到peak文件,即為.bed文件,對得到的peak進(jìn)行注釋,并進(jìn)行功能分析。
采用常用 reads 富集峰鑒定軟件 MACS2 在全基因范圍進(jìn)行 peak 掃描,得到 Peak 在基因組上的位置信息、peak 富集信息等。
圖 2.4.1 全基因組 Reads 富集峰
使用Chipseeker對Reads富集峰進(jìn)行注釋,得到tss上下游3k的基因注釋信息。使用bedtools對富集峰與protein coding取交集得到所在基因,對其進(jìn)行后續(xù)富集分析。
圖 2.4.2 Peak信息anno流程圖
結(jié)果文件見:
reads在基因組上的分布信息: /result/02.callPeak/WGY-target.bw
callPeak peak信息:/result/02.callPeak/WGY-target_peaks.bed
callPeak tss上下游3k注釋信息: /result/02.callPeak/WGY-target.peakanno.csv
callPeak 與 protein coding 交集基因信息: /result/02.callPeak/WGY-target_peaks.tsv
callPeak 與 protein coding 交集基因注釋信息: /result/02.callPeak/gene.list.annoinfo.xls
2.5. Peak 基因注釋與 GO 功能分析
Peak 所在基因進(jìn)行GO 功能分析,并按照基因功能進(jìn)行聚類分析。y軸為基因的功能聚類,x軸為基因count數(shù),顏色為校正p值。GO功能富集以padj小于0.05作為為顯著性富集的閾值,GO分析有3種類型,分別為CC(細(xì)胞組分),MF(分子功能),BP(生物過程)。富集結(jié)果見:
條形圖縱坐標(biāo)為GO Term,縱坐標(biāo)為count數(shù),顏色從紅到紫代表富集的顯著性大小。
圖 2.5.1 Peak 相關(guān)基因的GO 功能富集分析(條形圖)
氣泡圖縱坐標(biāo)為GO Term,點(diǎn)的大小代表注釋到GO Term上的基因數(shù),顏色從紅到紫代表富集的顯著性大小
圖 2.5.2 Peak 相關(guān)基因的 GO 功能富集分析(氣泡圖)
結(jié)果文件見:
2.6. Peak 基因注釋與 KEGG通路分析
KEGG(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)是整合了基因組、化學(xué)和系統(tǒng)功能信息的綜合性數(shù)據(jù)庫。KEGG通路富集以padj小于0.05作為顯著性富集的閾值,富集結(jié)果如下表所示,見結(jié)果文件:Enrichment/KEGG。 ?從KEGG富集結(jié)果中,選取最顯著的20個KEGG通路繪制柱狀圖進(jìn)行展示,若不足20個,則繪制所有通路,如下圖所示。圖中橫坐標(biāo)為KEGG通路,縱坐標(biāo)為通路富集的顯著性水平,數(shù)值越高越顯著。
圖 2.6.1 Peak 相關(guān)基因的KEGG通路富集分析(條形圖)
氣泡圖縱坐標(biāo)為GO Term,點(diǎn)的大小代表注釋到GO Term上的基因數(shù),顏色從紅到紫代表富集的顯著性大小
圖 2.6.2 Peak 相關(guān)基因的KEGG通路富集分析(氣泡圖)
結(jié)果文件:
附 錄
關(guān)于賽誠生物
廣州賽誠生物科技有限公司是一家專注于科研基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)服務(wù)及基因測序相關(guān)服務(wù)的生物技術(shù)公司。公司已有成熟的ChIP-seq,RNA-seq,甲基化及各種文庫構(gòu)建服務(wù)流程,具有豐富的文庫構(gòu)建和測序分析經(jīng)驗(yàn)。同時,公司也開發(fā)多項(xiàng)前沿的實(shí)驗(yàn)技術(shù),現(xiàn)已形成完善的ATAC-seq,CUT&TAG-seq體系。
除此之外,在基礎(chǔ)科研服務(wù)方面,我們也有巨大優(yōu)勢。傳統(tǒng)優(yōu)勢服務(wù)包括RNA pull down,DNA pull down,RIP,co-IP,細(xì)胞功能,流式檢測,F(xiàn)ISH等。最近剛剛興起的ChIRP實(shí)驗(yàn)已成為我們的主流產(chǎn)品,他可以同時檢測DNA、RNA、蛋白三者互作。
因此,我么擁有一支專注以“表觀組學(xué)”為核心的醫(yī)學(xué)轉(zhuǎn)化技術(shù)服務(wù)團(tuán)隊(duì),團(tuán)隊(duì)豐富的的科研經(jīng)驗(yàn)涵蓋了表觀基因組學(xué)和基因組學(xué)中的各個方面,對多個組學(xué)的數(shù)據(jù)分析和挖掘有著豐富的 經(jīng)驗(yàn)和全面的理解,比如:基因組修飾、染色質(zhì)調(diào)控、基因表達(dá)調(diào)控、基因組變異等,我們 致力于提供領(lǐng)先的個性化的表觀組學(xué)為核心的多組學(xué)整體解決方案。
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